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等電聚焦電泳

放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-06-27

原理

等電聚焦技術是一種根據樣品的等電點不同而使它們在pH梯度中相互分離的一種電泳技術。

本法的分辯率極高,所以在進行等電聚焦電泳時,要求樣品不能過于復雜,一般應經其他方法(如層析法)提純后再進行等點聚焦,才能得到比較滿意的結果。如利用人的純IgG再經過等電聚焦電泳,可以滿意地分離IgG的四個亞類。如IgG2濃縮于pH7.0的部位,IgG3濃縮于pH8.0~9.0的范圍內,IgG4則濃縮于pH6.0以下的部位,而IgG則分布于全部pH范圍,且只有IgG1能存在于pH9.0以上的部位。

等電聚焦電泳與其他分離方法結合起來,將是一項很有前途的分析鑒定和制備樣品的好技術。

器材與試劑配制

1.聚焦柱 有成品出售,分110ml440ml兩種。

2.電源 0V~1 200V可調20W的直流穩(wěn)壓電源。

3.載體兩極電解質 市售25ml瓶裝,濃度為40%或20%(W/V),pH范圍為2.5~11,也有其它pH范圍的,可根據實驗條件選擇購買。

4.蔗糖(分析純)

1. 電極液的配制見表:

表 電極緩沖液的配制

正極在中心管內

正極在柱頂

磷酸

或硫酸

0.050.2ml14ml

1Mol/L 酸溶液

0.0250.1ml0.52ml

1Mol/L 酸溶液

H2O

1556ml

525ml

蔗糖

1144g

表 負極緩沖液的配制

負極在中心管

負極在柱頂

氫氧

化鈉

0.10.4g14ml

0.050.2g0.52ml

2Mol/L 溶液

2Mol/L 溶液

蒸餾水

1456ml

525ml

蔗糖

1144g

此配制用量為最大用量,一般用1/5的量即可。括號內為440ml聚焦柱型號所用量配方。

6.重、輕液的配制與混合

⑴重、輕液的配制:配制方法見表:

重、輕液的配制方法

110ml

440ml

載體40%(ml

水及蛋白質溶液(ml

蔗糖(g

重液

1.9

37

26

輕液

0.6

51.5

重液

7.6

148

104

輕液

2.4

206

此表為梯度混合器所用量,如用手工混合法則應相應適當增加20%。

⑵重、輕液的混合:有條件的可采用梯度混合器裝柱。手工混合法操作如下:取24支試管(440ml聚焦柱則應取46支試管)按2-5表各加入重、輕液,充分混勻。

試管號

重液(ml

輕液(ml

試管號

重液(ml

輕液(ml

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

4.6

4.4

4.2

4.0

3.8

3.6

3.4

3.2

3.0

2.8

2.6

2.4

0.0

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

1.2

1.4

1.6

1.8

2.0

2.2

13

14

15

16

17

18

19

20

21

22

23

24

2.2

2.0

1.8

1.6

1.4

1.2

1.0

0.8

0.6

0.4

0.2

0.0

2.4

2.6

2.8

3.0

3.2

3.4

3.6

3.8

4.0

4.2

4.4

4.6

表 重、輕液的混合方法

操作方法

1.決定電極的極性 pH梯度范圍在6以下時,則聚焦柱底的電極為正極。如pH梯度的范圍在6以上時,則柱底為負極。原因是蔗糖濃度越大,電導越小,所以在等電點pH67的載體處,應該避免蔗糖濃度最大的部位。

2.裝柱 按電極的極性與電極液的要求裝柱。將聚焦柱垂直放置,先注入底部電極液,打開中心管下端的活塞,從中心管上端,用帶長膠管的注射器注入電極液,使液面在中心管下部開口處之上達1cm處即可。

3.注入載體溶液 加完后應使電極液仍浸沒中心管的下部開口,不使電極與載體溶液直接接觸。

4.加重、輕混合液 1號試管加起,用注射器沿管壁緩緩加入,流速約3ml/min,全部重、輕混合液加完后,再在上部加電極液,使上部電極浸沒。

5.連接冷凝水管。

6.電泳 電壓300V。開始電泳時,由于載體分子都不處于等電狀態(tài),所以它們都帶電,在電場影響下向各自的等電點移動,因此開始時電流較大,以后逐漸減小。所以在開始時電壓可稍低一些。電泳結束時電流約為0.30mA,電泳時間23天。

7.樣品的收集 斷電后,關閉中心管下端活塞以免電極液流出,放入樣品,流速2ml/min為宜。以部分收集器收集,每管2ml。

8.測每管的pH值和蛋白含量,將相近pH的同一蛋白質的管合并。

9.將分離的每一樣品成分過SepHadexG25(或G50),將蛋白質與載體分離開來。

 
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