上班前

① 開門注意通風，檢查門窗、空調設備、其它電器設備等是否正常。

② 用水注意先把水龍頭的水擰開一段時間。

③ 看看今天是否要用烘箱，確定即打開，注意升溫情況。

 

 上班過程

① 烘箱、電爐、馬弗爐、高壓鍋等不用即時關掉，無人看守時也必須關掉；

② 經常收拾桌面，清理用過的用具、玻璃儀器等；

③ 經常檢查試劑配制使用情況，是否有過期試劑、標準液等；

④ 對于架上試劑瓶經常拭擦以保持干凈無灰塵；

⑤ 原始記錄必須是實驗過程中的實際數據，不能隨意涂改，如果對結果有懷疑，也不能劃去或撕毀，而在備注注明情況，重新做試驗并記錄，直到結果滿意；

⑥ 原始記錄是應統(tǒng)一表格，歸檔保存，按每月整理收藏，（不常有的原始記錄酌情處理）；

⑦ 儀器用具分類擺放，用過的儀器用具即時清洗干凈，自然晾干（或烘干），置于指定位置存放，以備備用；（注意盡量不要用前匆匆忙忙清洗儀器用具）。

 

下班

① 確認未完成試驗樣品及儀器的安全性；

② 關閉所有電源，培養(yǎng)箱、冰箱除外；

③ 確認關好水龍頭；

④ 確認關好所有門窗。

 

標準液標定注意事項

 

普通注意事項：

1.各種基準物質烘干的溫度要求并不一樣；

 

2. 烘干過程，稱量瓶的蓋子應置于稱量瓶上，傾斜一定角度使半蓋狀態(tài)，不要把蓋另置于烘箱板上，這是為了防止有異物從烘箱頂部跌落到樣品中，也防止把烘箱板上的異物帶入樣品中；

 

3. 樣品應置于溫度計探頭附近；

 

4. 烘好后，把干燥器移到烘箱邊，用夾子等圈住稱量瓶，以最短的時間把稱量瓶移入干燥器中，蓋好干燥器，半個小時內，小心移開干燥器蓋少許，以放出部分熱空氣；

 

5. 樣品冷卻后則要稱量，不能待太長時間；

 

6. 稱量時始終一個原則，不要讓稱量瓶吸附到水氣、污跡或其它異物，所以直接用手接觸稱量瓶、用藥匙取樣品、開著天平門稱量甚至呼吸氣吹到稱量瓶都是不正確的操作；

 

7. 正確的稱量操作應是減量法稱量，為什么呢，因為減量法稱量，稱的是烘好的樣品，確保樣品大部分時間在天平的干燥環(huán)境中；

 

8. 如果增量法稱量，則要確保器皿干燥且外表也須干凈，由于是在天平中操作，所以不能碰到器皿以引起天平讀數異常，所以操作起來會麻煩很多；

 

9. 稱量過程中，只能用稱量瓶蓋輕輕敲打稱量瓶邊緣，使藥品均勻落到待測器皿中，敲藥時間盡量的短，這要求較熟練的操作；

 

10. 盡可能的多稱幾個樣品，結果取最可能的數值，舍棄較大和較小的數值。

 

關鍵：

烘干

冷卻

稱量

 

還原糖測定注意事項

 

普通注意事項：

1.堿性酒石酸甲、乙液與還原糖反應是定量關系，它們的多少直接影響測定結果的多少，從而影響檢測數據，所以堿性酒石酸甲、乙液必須精確吸取，保證每次取樣量一致。

影響堿性酒石酸甲、乙液吸取誤差的因素：

（1）堿性酒石酸甲、乙液在吸管中刻度液面的位置要保持一致。

（2）吸管外壁殘留的液體多少會造成堿性酒石酸甲、乙液取樣量的誤差，所以要習慣性的對吸管外壁的堿性酒石酸甲、乙液進行相同處理，保證每次外壁殘留液相對一致，從而減少液體取樣量的誤差。

（3）堿性酒石酸甲、乙液放入三角瓶的速度保持一致（不可吹），放完后要觀察其殘留在吸管中有多少，要保證每次殘留一致。

（4）堿性酒石酸甲、乙液的不是很明顯的沉淀（或濃度變化）也會對測定造成波動，取堿性酒石酸甲液的器具切記不要與堿性物質接觸（同時也要注意防止帶入堿性物質于甲液中），以避免甲液產生沉淀，盛甲液的容器時間長了，內壁上也會殘留固體（硫酸銅），這些固體顆粒也會造成檢測誤差。

 

2.滴定速度要保持均衡一致，趁熱以每2秒一滴的速度滴定為好（速度不要受滴定時間的長短而改變）；

 

3.試樣溶液滴定時要進行預測，正式測定時從滴定管滴加比預測體積少1ml的試樣溶液至錐形瓶中，控制在2min中內加熱至沸，保持沸騰以1滴/2s的速度滴定至終點；

 

4.電爐的溫度對檢測結果也有影響，所以要保證電爐充分預熱，同時三角瓶在電爐上的放置位置要保持一致；

 

5.測定時液體沸騰后的開始滴定的時間也要保持一致2min內，一般等液體充分沸騰后開始滴定；

 

6.滴定終點的判斷也要保持一致。等液體藍色剛好褪去為為滴定終點；

 

7.糖液稀釋及取樣也要注意精確，注意吸管正確使用方法；

 

8.折光糖度精心檢測，依此數據輔導還原糖的檢測。

 

9.注意輸液膠管漏液、變形，滴定管尖端氣泡等對檢測數值的影響。

 

10.三角瓶使用后清洗干凈。

有時無法準確找到滴定終點就是由于三角瓶未清洗干凈引起的。

 

關鍵：

吸取堿性酒石酸甲、乙液

沸騰并維持沸騰2 mins

整個滴定過程須控制在2 mins內完成

 

凱氏定氮蛋白質測定注意事項

普通注意事項：

1.原則上樣品越少，越容易消化，但樣品越少，計量的誤差可能性也越大，所以控制到蛋白質含量為0.10g左右，加入0.4g硫酸銅、6g硫酸鉀及20ml濃硫酸應是比較合理的消化方法；

 

2. 變色時因為是緩慢變色，所以可以兩種方法計時，一是完全變色后半小時即停止消化，二是剛變色后一個小時停止消化；

 

3.消化液完全冷卻后才能加水、轉移、定容，這三個步驟都會導致發(fā)熱，所以必須確保水溶液最后在定容到刻度時冷卻到室溫，當然要多次洗滌凱氏燒瓶（即凱氏定氮瓶）以確何轉移完全；

 

4. 消化液最好不要放置過夜，需要過夜測定時，請先轉移定容好消化液。定容好的消化液也不能放置時間太久（如幾天）才進行蒸餾滴定；

 

5.蒸餾時，加樣液過程可以從容操作，但是加堿后，必須緊密有序，堿的流入過程應是充滿整個漏斗口的，在堿還沒有放完時就應準備好加水以封住漏斗口，確保蒸發(fā)器中已有氨從漏斗口泄漏，而導致結果偏低。

 

6.加入的氫氧化鈉溶液除與硫酸銨作用外，還與消化液中的硫酸和硫酸銅作用，若加入的氫氧化鈉不夠，則溶液呈藍色，不生成褐色的氫氧化銅沉淀。所以，加入的氫氧化鈉必須過量，并且動作還要迅速，以防止氨的流失；

 

7. 停止蒸餾時，由于反應室外層的壓力突然降低，可使液體倒吸入反應室外層，所以，操作時，應先將冷凝管下端提高液面并清洗管口，再蒸一分鐘后關掉熱源。蒸餾是否完全，可用精密pH試紙測冷凝管口的冷凝液來測定，中性則說明已蒸餾完全；

 

關鍵：

樣品稱量入凱氏燒瓶

加堿

 

附：做蛋白質試驗化驗室的常見問題有，你犯了幾個：

1  沒有用長條紙稱量；

2  不知道樣品精確度是多少，用何種天平稱量；

3  直接從原試劑瓶中取藥稱量；

4  凱氏燒瓶角度不對（應45-60度之間）；

5  不固定凱氏燒瓶就進行消化，就是隨便掛上去，太危險；

6  消化溫度不知如何控制，什么時候該小火，小到多少，什么時候該大火擔心不加石棉網會使凱氏燒瓶破裂；

7  不知如何把握凱氏燒瓶以振搖消化液，也沒有準備厚手套；

8  不知道過夜保存的應是消化液而不是定容液（消化液定容后應及時蒸餾）；

9  第二天發(fā)現定容液液面低于刻度時又加水到刻度；

10 標定基準物沒有烘到要求溫度；

11 以為蒸餾要在通風櫥中進行；

12 不知道定氮儀如何裝，如何清洗，總是拆下來人工清洗，結果洗不干凈又打破了不少零件；

13 不知如何正常使用定氮儀，對后面的操作如清洗、加堿注意事項、蒸餾火力控制等無所適從；

13 對結果沒有考慮到要計算干基還是濕基；

14 吸管吸樣品液后沒有用濾紙把沾在吸管外壁的樣液吸干；

15 用吸管去吸標準液加到滴定管中去；

16 沒有取下滴定管自然垂直查看刻度；

17 用2000ml的大燒瓶作蒸發(fā)器而不作任何固定，危險重重，對用大三角瓶作為蒸發(fā)器覺得不可理議；

18 對原始記錄管理不到位。

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